1、如何配置DSS溶液？ 

用无菌水配置DSS到所需浓度，建议使用0.22μm的过滤膜过滤。

2、DSS可以高压灭菌吗？

不可以，高压灭菌会导致DSS分子结构发生变化。

3、DSS造模方案包括哪些？

自由饮、口服、或灌胃给药。

4、每天给大鼠和小鼠饮水量体积是多少（包含急性和慢性造模）？

小鼠（20~25g）每只每天7~10ml，大鼠（100 g）每只每天10~11ml。

5、小鼠急性和慢性造模浓度？造模周期？

急性造模：3%~5%，周期：7天左右；慢性造模：1%~3%，周期：9周左右。

6、DSS可用于哪些动物造模？ 

鼠、大鼠、仓鼠、豚鼠或猪、兔、斑马鱼、果蝇等。

7、影响DSS造模成功的关键因素有哪些？

DSS浓度、分子量、给药时间以及动物种属。

8、慢性结肠炎造模过程中，为什么第二阶段诱导总是慢于第一阶段？

第一阶段诱导后DSS耐受水平会提高，症状出现缓慢或较轻是常见的。若想要缩短第二阶段诱导周期，可以适当提高DSS浓度。

9、DSS和TNBS均是结肠炎模型，两者有什么区别？

DSS诱发溃疡性结肠炎，TNBS诱发克罗恩病结肠炎。

10、3%的DSS，小鼠饮用了三天，没有明显的体重下降现象。

这属于正常现象，有些动物反应较慢，甚至饮用DSS的第5天才出现体重下降。若是第7天还未出现明显症状，建议重新提高DSS浓度到3.5%~5%。

11、如何灌喂造模？

每天分别于10:00,14:00和18:00给予2%的DSS溶液灌喂，每次30ml/kg,不另外补水。每次最后以一次灌喂后给予足量混合配方颗粒饲料，次日8:00取走饲料。连续造模9天即可。

12、DSS造模后，会有小肠出血现象正常吗？

DSS浓度过高会导致小肠出血，轻度小肠出血无副作用，若出血过多，建议降低DSS的浓度。

13、DSS饮水后，小鼠体重明显降低，但是病理切片HE染色没有炎症现象？

DSS的应用达到一定的阈值才能成功诱导肠炎，阈值如果但不到，出现体重下降，但是无炎症表现是正常现象。这时可以适当延长DSS饮水周期。

14、为什么同一笼小鼠出现的症状有差异？

动物之间存在着个体差异，以及饮用水量也不同，而且不同的动物对DSS的耐受性也不同。

15、DSS造模期间是否可以不同时间点检测，以及观察DSS造模前期，什么时候会造成上皮屏障破坏？

可以在不同时间点检测。一般2天造成上皮屏障破坏，可以选择在3,5,7天，进行病理检测。

16、为什么不同批次的DSS使用浓度会有差异？

DSS是葡聚糖聚合物，分子量是平均分子量，每个批次之间会存在分子量的差异，而分子量对结肠炎造模有影响。通常批次间比较稳定，但少部分也会存在差异。建议客户根据实验需求，购买足够的同一批次的产品，或者使用批次之前进行预实验。

17、造模成功的指标有哪些？

1）疾病活跃指数评分（DAI）：体重、粪便粘稠度、粪便潜血等指标

2）组织学变化评分：标准方法为H&E染色

3）结肠长度：急性结肠炎模型中，第8天可检测到结肠长度缩短；慢性结肠炎模型中，结肠长度缩短更加明显。

18、造模失败的原因？

DSS造模会受到多种因素影响，包括小鼠类型、DSS分子量、DSS浓度、给药周期等。

其中，DSS浓度是影响造模成功最主要的因素。

失败可能的原因：DSS浓度过低、给药时间短、小鼠未饮用到DSS。

解决方案：1）提高DSS浓度（有文献报道最高可用10% DSS给药）；2）延长给药周期，

可持续给药7-10天；3）观察是否出现漏水、瓶口堵塞等情况。

19、造模成功率低的原因？

DSS造模影响因素：动物种属、给药时间、DSS浓度、DSS分子量等。动物种属、动物大小及性别：不同的遗传背景可能引起DSS易感性不同。DSS模型可采用小鼠、大鼠、仓鼠和豚鼠造模, 但各种属动物对DSS易感性、临床表现、炎症严重程度和病变部位不同。建议以6-8周，体重18g以上的小鼠为建模对象。

造模成功率低的可能原因：小鼠间个体背景差异、饮用DSS量差别较大、DSS含硫量较低或DSS分子量较大等原因。

解决方案：1、尽量使用相同性别、大小、体重的小鼠；2、保证每笼小鼠数量在3-5只，避免过多；3、确保每瓶DSS饮用水足量，且不可阻塞；4、DSS质量也较为重要。

20、小鼠死亡率高的原因？

可能的原因：DSS浓度过高、给药周期过长建议：降低DSS浓度（有文献报告，可使用1-2%浓度DSS建立急性肠炎）；减少给药周期（有文献报告，可使用4-7天的给药周期）。

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